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新聞資(zi)訊

PCR(聚合酶鏈式反應)幾(ji)乎(hu)是(shi)分(fen)子實驗室里最常見(jian)的(de)技術之一(yi)。但有時候,做著做著,條帶(dai)(dai)就是(shi)不上(shang)鏡:要么無條帶(dai)(dai),要么全是(shi)拖尾(wei),要么陰性對(dui)照還神奇地亮了……??

別急!今天我(wo)們就來盤點 PCR失敗的5個(ge)常見原因,并提(ti)供實(shi)用的解決辦法,幫你少踩坑。

1???模板DNA質量或濃(nong)度(du)不合適(shi)

?? 表(biao)現:無條(tiao)帶、條(tiao)帶過弱或拖尾。

? ???

?? 原因:DNA降解、雜質殘留(liu),或者(zhe)濃度過低/過高(gao)。

? 解決辦法:

  • 保證DNA純度(A260/A280 = 1.8–2.0);
  • 稀釋過濃模板;
  • 植物/土壤等樣本建議用高純度提取試劑盒。

2???引物設計或濃度有問題

???表現:非特異性條帶、引物二聚體。

???原因:引物設計不合理,濃度過高/過低。
??解決辦法

  • 長度(du)18–25 bp,GC含(han)量40–60%;

  • 避免3’端互補;

  • 終濃(nong)度一般0.1–0.5 μM,必要時做梯度PCR優(you)化。

3???PCR體系或酶活性問題

???表現:完全無擴增或擴增效率低。

???原因:Taq酶失活、Mg2?濃度不合適、dNTP降解。
??解決辦法

  • 分裝保(bao)存酶(mei),避免(mian)反復凍融;

  • 優化Mg2?濃度(1.5–2.5 mM);

  • 用新鮮dNTP;

  • 推薦選擇性能優異的PCR預混液??? 預混(hun)液中已優化了緩沖體系和酶活性,能(neng)顯著提升擴(kuo)增成(cheng)功率,減少反復調(diao)試的時間,非(fei)常適合(he)常規(gui)科研實驗(yan)。

4???實驗操作污染

???表現:陰(yin)性對照也出現條帶。

???原因:PCR產物殘留、移液槍污染、空氣中DNA污染。
??解決辦法

  • 嚴格分區操作(提取區/體系(xi)配置區/產物(wu)分析區分開);

  • 用帶濾芯的槍頭;

  • 定期清(qing)潔(jie)實(shi)驗(yan)臺(tai),使用核酸去(qu)除劑。

5???循環條件設置不當

???表現:條帶模糊、非特異性擴增或無結果。

???原因:退火溫度過低/過高、延伸時間不足、循環數過多。
??解決辦法

  • 根據(ju)引(yin)物Tm值設置退(tui)火溫度;

  • 延(yan)伸時間約 1 kb/min;

  • 循環數控制在30–35次。

???總結

PCR失敗并不可怕,常見問題主要集中在?模板、引物、體系、操作和循環條件?這五個方面(mian)。逐一排查,總能找到原因。

而對于高校實驗室或科研人員來說,選擇一款高性能PCR預混液,往往能讓PCR事半(ban)功倍,節省(sheng)大量試(shi)錯(cuo)時間。

?? 科研路上,少(shao)一點彎(wan)路,多一點高效(xiao)!

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